Транспортировка крови в лабораторию

2.1. Общие рекомендации

2.1.1.
Накануне взятия крови исключить
физические нагрузки, стрессовые
ситуации, физиотерапевтические процедуры,
прием лекарственных средств (за
исключением случаев медикаментозного
лечения по назначению врача), оральных
контрацептивов, прием спиртных напитков
и жирной пищи. Непосредственно перед
исследованием не курить.

2.1.2. При
исследовании функции щитовидной железы
в период лечения препаратами, содержащими
гормоны ЩЖ, исследование проводится
через 24 ч. после последнего приема
препарата; за 2-3 дня до взятия крови
исключить прием препаратов, содержащих
йод.

https://www.youtube.com/watch?v=ytcopyrightru

2.1.3. При
исследовании ПСА за неделю до анализа
исключить любые манипуляции с
предстательной железой.

2.1.4.
Взятие крови производят утром, натощак
(во избежание хилёзности, т. е. мутности
сыворотки), в условиях физиологического
покоя. Перед забором крови пациенту
необходимо предоставить 15-минутный
отдых.

2.1.5.
Взятие крови осуществляют в процедурном
кабинете ЛПУ, в положении пациента
«сидя» или «лёжа», из локтевой вены с
соблюдением правил асептики и антисептики.
Кровь собирают в стерильную пробирку,
шприц-моновет или cистему для взятия
крови (Vacutainer®, Vacuette®).

2.1.6. Для
получения сыворотки венозная кровь
отстаивается до полного свертывания.
После образования фибринового сгустка
последний отделяют от стенок стерильной
стеклянной палочкой, строго индивидуальной
для каждой пробы, пробирку центрифугируют
при 3000 об/мин в течение 15 мин*.

* Шприц-моновет
и cистемы для взятия крови (Vacutainer®,
Vacuette®) подвергаются центрифугированию
без предварительных манипуляций.

2.1.7.
Надосадочную жидкость желтого цвета
(сыворотку) осторожно переносят пипеткой
в пустую пробирку с крышкой (на 5 мл).

2.4. Правила взятия и хранения крови для исследования гликированного (гликозилированного) гемоглобина

Транспортировка крови в лабораторию

2.2.1. Кровь: в
холодильной камере ( 40С – 80С) в течение
1-х суток.

– в
холодильной камере при температуре
40С – 80С в течение 4-х суток;

– в
морозильной камере при температуре
-200С в течение 2-х недель.

Допускается
только однократное размораживание!

ВНИМАНИЕ! Исследованию
подлежит сыворотка, не содержащая
примеси эритроцитов, бактериальных
проростов, хилёза, гемолиза. При наличии
любого из указанных признаков сыворотка
уничтожается и назначается повторное
взятие крови.

2.4.1.
Взятие крови производится утром натощак
из локтевой вены, соблюдая правила
асептики и антисептики.

2.4.2.
Кровь собирают в специальную пробирку,
содержащую ЭДТА, плавно перемешивают.
Не центрифугировать!

2.4.3.
Доставка в Лабораторию в день взятия
крови.

2.4.4.
Хранение: до 2-х недель при температуре
-200С.

2.5. Правила проведения пренатального скрининга

2.5.1.
Оптимальные сроки проведения исследования:
I триместр – 10-13 недель беременности;
II триместр – 16-18 недель беременности.

2.5.2. При
направлении на исследование заполняется
специальное направление, в котором
необходимо указать индивидуальные
данные беременной женщины: возраст
(число/месяц/год), вес, результаты УЗИ
(КТР, БПР, количество плодов, срок
беременности по УЗИ (недели дни); если
имеются – данные о величине шейной
складки – NT) с обязательным указанием
даты УЗИ и ФИО врача, проводившего УЗИ;
наличие дополнительных факторов риска
(курение, сахарный диабет, ЭКО), этническая
принадлежность.

2.5.3. Для
скрининга II триместра беременности
можно использовать данные УЗИ, проведенного
в I триместре.

3. Правила взятия, хранения и транспортировки биоматериала

для цитологическихисследований

5.1. В
течение 24-х часов перед исследованием
необходимо исключить спринцевание,
применение интравагинальной терапии
и половые контакты. Нельзя брать материал
во время менструации. Наиболее
информативными являются пробы, взятые
на 14-20 дни после начала менструации.

5.2.
Материал берется до бимануального
исследования, проведения различных
диагностических проб, до взятия материала
на ПЦР. Взятие материала осуществляется
без предварительной обработки слизистой
влагалища.

5.3. Соскоб
со слизистой влагалища/цервикального
канала берется нейлоновой щеточкой
Cervex-Brush, шпателем или другим инструментом
и равномерно распределяется по стеклу,
оставляя один конец стекла чистым (для
маркировки). На стекло берется одна
точка, дублируется еще на одно запасное
стекло (всего два стекла на одну точку).
Мазки должны быть зафиксированы
посредством высушивания на воздухе
(30-60 мин).

5.4. Стекла
должны быть промаркированы (№ и Ф. И.О.
пациента), сложены мазками друг к другу,
упакованы в индивидуальный пакет с
соответствующей сопроводительной
надписью (ЛПУ, Ф. И.О. пациента, № на
стекле).

5.5.
Хранить высушенные мазки можно до 6 дней
при комнатной температуре.

5.6. Пакет
и заполненное направление (на каждую
точку свое направление с указанием вида
биоматериала) передаются в Лабораторию.

для
бактериологических исследований

3.1. Взятие
биоматериала производят до применения
курса антибактериальной терапии или
не менее, чем через неделю после ее
завершения.

3.2. Для
предупреждения контаминации пробы
микроорганизмами из внешней среды
взятый биоматериал переносят в пустой
контейнер или пробирку с транспортной
средой с соблюдением стандартных правил
стерильности: пробка пробирки (контейнера)
открывается/закрывается так, чтобы
внутренняя часть пробки осталась
стерильной, стерильная посуда открытой
держится недолго.

– упаковку
открыть в указанном месте согласно
схеме;

– пробирку
вынуть и открыть, крышку выбросить;

– зондом
взять соскоб/мазок, биоптат или обмакнуть
зонд в биологическую жидкость;

– зонд
с биоматериалом сразу поместить в
пробирку (ручка зонда является крышкой
пробирки);

– пробирку
пронумеровать, номер указать в направлении.

3.4. Виды
биологического материала для взятия в
транспортную угольную среду: мазки/соскобы,
сок предстательной железы, ликвор,
синовиальная жидкость, биоптат.

3.5.
Хранение биоматериала в пробирках с
транспортной средой для выявления микоплазм
и уреаплазм, неспецифической микрофлоры до
момента транспортировки – в
холодильной камере ( 4ºС – 8ºС).

Доставка
в Лабораторию в течение одних суток.

3.6.
Хранение биоматериала в пробирках с
транспортной средой для выявления трихомонад,
гонококков, культур анаэробных бактерий до
момента транспортировки – при
комнатной температуре.

Необходимо
оповестить Лабораторию накануне или в
день взятия биоматериала до 11:00.

Доставка
в Лабораторию в день взятия биоматериала.

3.7. Нативный
биоматериал: мокроту, сок предстательной
железы, синовиальную жидкость от
1 до 10 мл для выявления неспецифической
микрофлоры, микоплазм и уреаплазм
собирают в пустой стерильный контейнер.

Хранение
нативного биоматериала до момента
транспортировки – в
холодильной камере ( 4ºС – 8ºС).

Доставка
в Лабораторию в день взятия материала.

3.8. Мочу
для исследования на степень
бактериурии (утренняя
средняя порция, 10-20 мл) собирают в пустой
стерильный контейнер с крышкой после
тщательного туалета наружных половых
органов.

Хранение
биоматериала до момента транспортировки – в
холодильной камере ( 4ºС – 8ºС).

3.9. Кровь
на стерильность.

Наиболее
информативной является проба крови,
взятая во время подъема температуры.

Кровь
собирают в фирменные флаконы с двухфазной
транспортной средой (флакон для взрослых,
флакон для детей). Пластмассовую крышку
флакона аккуратно вскрыть, появившуюся
часть резиновой пробки протереть 70%-м
спиртом. В стерильных условиях шприцем
взять кровь из вены и ввести через
резиновую пробку во флакон (4 мл – во
флакон для взрослых, 2 мл – во флакон для
детей).

Хранение
крови до момента транспортировки – при
комнатной температуре.

3.10. Грудное
молоко для
выявления неспецифической микрофлоры
берется из каждой груди в отдельный
стерильный герметично закрывающийся
стаканчик. Подписать стаканчики: «левая
грудь», «правая грудь».

Перед
сбором биоматериала грудь помыть теплой
водой с мылом, вытереть чистым полотенцем,
тщательно обработать соски и околососковую
область ватным тампоном, смоченным 70%
раствором этилового спирта, просушить
стерильной салфеткой (каждая железа
обрабатывается отдельным тампоном).
Первые 10-15 мл сцеженного молока для
анализа не используются. Вторую порцию
молока из каждой груди сцедить в
подписанный стаканчик в количестве ~
10 мл.

Доставка
в Лабораторию в течение 2-х часов в день
взятия материала.

https://www.youtube.com/watch?v=https:accounts.google.comServiceLogin

3.11. Кал
на дисбактериоз.

Перед
взятием пробы запрещается употребление
алкоголя в течение 3-х суток и
прием антибиотиков в
течение 2-х недель. Стул необходимо
получить без клизм и слабительных. Детям
при запорах можно использовать для
раздражающего эффекта кусочек мыла.
Фекалии собирают в индивидуальное
судно, отмытое от дезинфектанта.
Стерильной ложкой отбирают 3-5 г средней
порции кала и помещают в стерильный
контейнер.

Хранение
до момента транспортировки – контейнер
с биоматериалом для сохранения тепла
хранить обернутым в вату и бумагу.

3. Правила взятия, хранения и транспортировки биоматериала

Правила сбора
мочи

Версия
для печати

Введение

Моча
является клиническим материалом, который
наиболее часто исследуется на наличие
микроорганизмов в большинстве лабораторий.
Несмотря на рутинность и кажущуюся
простоту исследования мочи, эта тема
постоянно обсуждается как клиницистами,
так и микробиологами во всем мире.
Существуют значительные вариации в
подходах к правилам забора, транспортировки,
исследования и интерпретации результатов
анализов.

Пациенты
с неосложненными ИМВП (острый цистит и
пиелонефрит), как правило, лечатся в
амбулаторных условиях. Основными
возбудителями острого цистита, которым
чаще страдают женщины, являются кишечная
палочка (70 – 95%) и сапрофитический
стафилококк (5 – 20%). Исследование мочи
является относительно дорогостоящим
и трудоемким методом, а возбудители и
их чувствительность к антибиотикам при
остром цистите достаточно предсказуемы.
Поэтому микробиологическое исследование
мочи в этом случае рутинно проводить
не обязательно и данное заболевание
можно лечить эмпирически.

В
силу деликатности вопросов, связанных
с инфекционными процессами мочеполовой
сферы, зачастую медицинские работники
считают не совсем удобным детально
объяснить пациенту правила сбора мочи,
а пациенты в свою очередь стесняются
об этом спрашивать. Иногда сами врачи
не имеют четкого представления об этих
правилах.

Общие
положения по сбору мочи:

  1. У
    здорового человека
     моча
    стерильна и только транзиторно
    колонизируется небольшим числом
    микроорганизмов. Однако загрязнение
    образца мочи нормальной микрофлорой
    уретры и периуретральной области
    приводит к ее размножению и к ошибочным
    результатам бактериологического
    исследования.

  2. У
    пациентов с явной клинической
    картиной
     (частое,
    болезненное мочеиспускание и др.) для
    диагностики обычно достаточно
    исследования одной пробы мочи до
    назначения антибиотиков и второй через
    48 – 72 ч после начала их приема. При
    бессимптомном течении ИМВП могут
    понадобиться 2 – 3 исследования мочи.
    При подозрении на туберкулез мочевых
    путей необходимо отправить на исследование
    3 последовательных утренних порции
    мочи.

  3. Моча,
    собранная в течение суток
     или
    нескольких часов, непригодна для
    микробиологического исследования.

  4. Не
    следует направлять на микробиологическое
    исследование более
    одного образца мочи в течение 24 ч
    .

  5. Направление
    на исследование
     должно
    содержать сведения о наличии или
    отсутствии симптомов у пациента. Эта
    информация очень важна для интерпретации
    результатов количественного исследования,
    особенно если выявляется малое число
    микроорганизмов.

  6. Хранение
    образцов мочи
     при
    комнатной температуре приводит к
    размножению как возбудителя, так и
    загрязняющей флоры. При невозможности
    произвести посев на питательные среды
    не позднее 30 мин после забора, образцы
    мочи необходимо поместить в холодильник
    при температуре 4°С. Посев мочи,
    хранившейся в холодильнике, должен
    быть произведен не позднее 24 ч от момента
    забора.

Наиболее
распространенными методами забора мочи
для бактериологического исследования
являются взятие
средней порции во время обычного
мочеиспускания,
получение мочи путем катетеризации
мочевого пузыря и надлобковой пункции.
При заборе мочи во время обычного
мочеиспускания возможно загрязнение
образца микрофлорой дистального отдела
уретры у пациентов обоего пола, а у
женщин еще и микрофлорой преддверия
влагалища.

При получении материала
путем надлобковой
пункции в
асептических условиях такое загрязнение
исключается, но этот метод является
инвазивным и должен использоваться
только в определенных ситуациях. К ним
относятся подозрение на анаэробную
этиологию ИМВП, повреждение спинного
мозга с нарушением функции органов
малого таза, ранний возраст пациентов
(новорожденные и дети первых лет жизни),
а также случаи, когда при исследовании
средней порции мочи не удается получить
определенного результата микробиологического
исследования. Взятие мочи путем катетеризации
мочевого пузыря тоже
является инвазивной процедурой, при
которой возможно занесение инфекции.

Наиболее
предпочтительным материалом для
микробиологического исследования при
ИМВП является средняя порция мочи
(первая порция богата микрофлорой уретры
и не подходит для исследования), собранная
при обычном мочеиспускании после
предварительного туалета наружных
половых органов.

Предварительный
туалет половых органов с
использованием обычного мыла у женщин
уменьшает загрязнение мочи микрофлорой
преддверия влагалища. Антисептики не
должны применяться для обработки
периуретральной области перед забором
мочи, так как могут привести к искусственному
снижению микробного числа этиологически
значимого возбудителя. При взятии мочи
у мужчин не требуется какая-либо обработка
периуретральной области, вне зависимости
от наличия или отсутствия крайней плоти.

Существуют
и другие методы забора мочи для
микробиологического исследования,
применяемые в основном в специализированных
клиниках, у ограниченного контингента
больных для того, чтобы определить
локализацию инфекционного процесса.
Такими методами являются раздельное взятие
образцов мочи из мочевого пузыря и
мочеточников во время цистоскопии и
взятие проб мочи до и после промывания
мочевого пузыря раствором,
содержащим неомицин и иногда эластазу.

Для
того чтобы пациент самостоятельно
правильно собрал мочу, его необходимо
подробно проинструктировать, используя
доступные термины, а также снабдить
письменной инструкцией и стерильным
контейнером с четко отмеченным уровнем,
до которого его нужно заполнить (около
50 мл) [3]. Важно, чтобы пациент понимал
необходимость соблюдения инструкции
и был заинтересован в получении
достоверных результатов анализа.

Необходимо
избегать использования в качестве
консерванта мочи борной
кислоты,
так как это может привести не только к
частичной гибели возбудителя, но и, в
некоторых случаях, к последующему
выделению микроорганизмов, не имеющих
этиологического значения [5]. Однако в
определенных ситуациях (невозможность
произвести посев мочи в первые 30 мин
после забора, отсутствие холодильника)
все же допустимо использование для
хранения мочи (не более 24 ч) борной
кислоты в концентрации 1,8 %. При этом
следует помнить, что для получения этой
концентрации консерванта количество
мочи должно быть строго определенным.


фамилия, имя,
отчество, пол и возраст пациента;


название лечебного
учреждения и отделения;


время и метод взятия
материала;


наличие или отсутствие
симптомов ИМВП, сопутствующей патологии
мочевых путей или обмена веществ
(например, сахарного диабета);


сведения о проводимой
антибактериальной терапии с указанием
дозы, длительности применения препаратов
и их эффективности.

Инструкция
по забору мочи для женщин:

  1. Перед
    сбором мочи подготовьте и разместите
    перед собой 6 – 10 чистых ватных шариков,
    сосуд с теплым мыльным раствором
    (пользуйтесь обычным туалетным мылом),
    сосуд с теплой кипяченой водой и
    контейнер для сбора мочи (крышку
    контейнера приоткройте так, чтобы ее
    можно было снять одной рукой).

  2. Вымойте
    руки с мылом.

  3. Удобно
    расположитесь на унитазе и разведите
    колени как можно шире.

  4. Пальцами
    одной руки разведите половые губы и
    удерживайте их в этом положении во
    время всего подмывания.

  5. Вымойте
    область наружных половых органов,
    последовательно меняя 4 ватных шарика,
    смоченных в мыльном растворе. Каждым
    шариком необходимо провести по
    направлению от лобка к заднему проходу
    только один раз, стараясь проникать во
    все складки.

  6. Промойте
    намыленный участок с помощью двух и
    более ватных шариков, смоченных в теплой
    кипяченой воде. Каждым шариком необходимо
    провести по направлению от лобка к
    заднему проходу только один раз, стараясь
    проникать во все складки.

  7. Снимите
    крышку с контейнера и возьмите его в
    руку, стараясь не касаться краев.
    Приготовьтесь собрать мочу.

  8. Удерживая
    половые губы разведенными, выпустите
    немного мочи, приостановите мочеиспускание,
    а затем, подставив под струю мочи
    контейнер, наполните его до указанного
    уровня (около 50 мл).

  9. Тщательно
    закройте контейнер крышкой и немедленно
    передайте в лабораторию. При невозможности
    быстрой (в течение 30 мин) доставки мочи
    в лабораторию, поместите её в холодильник
    при температуре 4°С и передайте в
    лабораторию не позднее 24 ч с момента
    забора.

Инструкции
по забору мочи для мужчин:

  1. Вымойте
    руки с мылом.

  2. Отведите
    назад крайнюю плоть (если она не обрезана)
    и выпустите небольшое количество мочи.
    Приостановите мочеиспускание.

  3. Удерживая
    крайнюю плоть в отведенном положении,
    направьте струю мочи в контейнер и
    наполните его до указанного уровня
    (около 50 мл).

  4. Тщательно
    закройте контейнер крышкой и немедленно
    передайте в лабораторию. При невозможности
    быстрой (в течение 30 мин) доставки мочи
    в лабораторию, поместите ее в холодильник
    при температуре 4°С и передайте в
    лабораторию не позднее 24 ч с момента
    забора.

https://www.youtube.com/watch?v=ytadvertiseru

Инструкция
по забору мочи методом катетеризации
мочевого пузыря:

  1. Приготовьте
    ватные шарики, смоченные спиртом,
    стерильный катетер, стерильное
    вазелиновое масло и стерильный контейнер
    для мочи.

  2. Обработайте
    область вокруг наружного отверстия
    мочеиспускательного канала ватными
    шариками со спиртом 2 – 3 раза.

  3. Катетеризируйте
    мочевой пузырь стерильным катетером,
    предварительно опустив его кончик в
    стерильное вазелиновое масло.

  4. Выпустите
    из мочевого пузыря 15 – 30 мл мочи, а затем
    наполните контейнер (около 50 мл).

  5. Тщательно
    закройте контейнер крышкой и немедленно
    передайте в лабораторию. При невозможности
    быстрой (в течение 30 мин) доставки мочи
    в лабораторию, поместите ее в холодильник
    при температуре 4°С и передайте в
    лабораторию не позднее 24 ч с момента
    забора.

Adblock detector